Afide nero dei cereali

L’afide nero dei cereali, Rhopalosiphum padi, è un fitofago comune di frumento, orzo, avena, segale, triticale, mais e altre graminacee. Le colonie si concentrano alla base dei culmi, nelle guaine e sulle foglie, sottraggono linfa e producono melata. La sua importanza deriva anche dalla capacità di trasmettere il virus del nanismo giallo dell’orzo, perciò il rischio virologico può superare il danno alimentare visibile.

Rhopalosiphum padi è comunemente chiamato afide nero dei cereali. Gli adulti e le neanidi sono piccoli, globosi, generalmente verde oliva o verde scuro; nelle forme attere può essere visibile una zona rossastra alla base dei sifoni. Le colonie si sviluppano soprattutto tra culmo e guaina, alla base degli accestimenti, sulla pagina inferiore delle foglie, nelle spighe e, nel mais, nel cartoccio e sulle foglie giovani.

Il danno diretto è spesso limitato a basse densità, ma popolazioni elevate possono causare sottrazione di linfa, indebolimento, ingiallimenti, ridotto riempimento delle cariossidi, melata e fumaggine. La presenza dell’afide non dimostra da sola un’infezione virale: i sintomi del virus del nanismo giallo dell’orzo devono essere interpretati considerando coltura, epoca e distribuzione dei sintomi.

Controllare più punti dell’appezzamento, osservando la base delle piante, le guaine, la pagina inferiore delle foglie e le spighe.

• Colonie di afidi verde oliva o scuro, spesso con individui alati.
• Ingiallimenti o striature giallastre sulle foglie in caso di alimentazione intensa.
• Accartocciamento o arrotolamento delle foglie, soprattutto nel mais e nei giovani cereali.
• Melata appiccicosa e successiva fumaggine su foglie, guaine o spighe.
• Riduzione del vigore, accestimento debole, allettamento indiretto o scarso riempimento delle cariossidi nelle infestazioni severe.
• Nanismo, arrossamento o ingiallimento diffuso e riduzione degli accestimenti compatibili con il virus del nanismo giallo dell’orzo, non diagnosticabili dalla sola presenza dell’afide.

Può essere confuso con Rhopalosiphum maidis, spesso più associato al mais, con Sitobion avenae e con Metopolophium dirhodum. La posizione sulla pianta, il colore e la forma non sono sempre sufficienti per una diagnosi certa.

La diffusione avviene soprattutto tramite individui alati provenienti da cereali infestati, colture volontarie, graminacee spontanee, bordure e mais o sorgo. Una continuità di piante verdi tra una coltura e l’altra crea un ponte favorevole alla sopravvivenza e alla moltiplicazione.

Temperature miti, autunni lunghi, colture fitte, disponibilità elevata di azoto, stress idrico e ridotta presenza di antagonisti possono favorire l’aumento delle popolazioni. Il virus del nanismo giallo dell’orzo viene acquisito e trasmesso durante le punture di alimentazione; la sola osservazione di afidi non prova che il virus sia presente nell’appezzamento.

Il ciclo tipico è dioico e olociclico. L’ospite primario in Europa è soprattutto il ciliegio a grappoli, Prunus padus, sul quale le uova svernano vicino alle gemme o nelle fessure della corteccia. In primavera si sviluppano fondatrici e alcune generazioni, talvolta causando accartocciamento delle foglie giovani.

Le forme alate migrano quindi verso frumento, orzo, avena, mais e altre Poaceae. Sulle graminacee le femmine possono riprodursi per partenogenesi, generando più generazioni vivipare. L’affollamento, l’invecchiamento della coltura, il peggioramento della qualità alimentare e le condizioni stagionali favoriscono la produzione di individui alati.

In autunno alcune popolazioni ritornano verso Prunus padus e producono forme sessuate e uova svernanti; in aree a clima mite possono invece persistere sulle graminacee senza completare il ritorno all’ospite primario. Le date variano sensibilmente tra Nord, Centro e Sud Italia e secondo andamento termico e disponibilità di ospiti verdi.

Confermare, quando possibile, che l’infestazione comprenda Rhopalosiphum padi e non soltanto altre specie del complesso degli afidi dei cereali. Esaminare più aree, la base dei culmi, le guaine, le foglie inferiori e le spighe; controllare contemporaneamente predatori, parassitoidi e sintomi compatibili con virosi.

Le decisioni devono basarsi sulle soglie e sulle schede di difesa integrata aggiornate per la specifica coltura e regione italiana. Non esiste una soglia universale: contano densità, distribuzione, stadio della coltura, rischio di trasmissione virale, andamento meteorologico e capacità degli antagonisti di contenere la popolazione.

• Su infestazioni localizzate, privilegiare il monitoraggio ravvicinato e la protezione dei nemici naturali.
• Se il trattamento è giustificato, scegliere solo un prodotto autorizzato in Italia per quella coltura e per gli afidi indicati in etichetta.
• Rispettare modalità d’impiego, intervallo di sicurezza, limitazioni stagionali e tutela degli impollinatori e degli organismi utili.
• Non trattare automaticamente le colture mature: la perdita economica può essere inferiore al danno collaterale sulla fauna utile.

La gestione biologica è parte integrante della difesa integrata. Evitare trattamenti non necessari ad ampio spettro che eliminano coccinellidi, crisopidi, larve di sirfidi, ragni e parassitoidi come specie di Aphidiinae.

• Durante il monitoraggio registrare anche larve predatrici, adulti di coccinellidi, pupe o mummie parassitizzate e afidi colpiti da funghi.
• Mantenere, dove compatibile con la coltura e la normativa aziendale, elementi marginali e una diversità vegetale utile agli antagonisti, evitando però che diventino una fonte incontrollata di graminacee infette o di ponte verde.
• Nei sistemi protetti o nelle produzioni a basso impatto valutare esclusivamente organismi di biocontrollo e formulati ammessi per quella coltura e per quell’uso in Italia, seguendo l’etichetta.
• Intervenire solo quando il rischio economico è concreto: la conservazione dei nemici naturali è spesso più utile di un trattamento preventivo.

Ispezionare regolarmente cereali autunno-vernini, cereali volontari, bordure e mais dalla ripresa vegetativa fino alla maturazione. Campionare più zone del campo, contando gli afidi per culmo o per pianta e annotando lo stadio della coltura e la presenza di antagonisti.

• Gestire i cereali volontari e le graminacee infestanti prima dell’emergenza della coltura successiva, quando ciò è agronomicamente e ambientalmente appropriato.
• Evitare eccessi di azoto e mantenere un’irrigazione equilibrata, una semina adeguata e una buona struttura del terreno per ridurre lo stress.
• Valutare varietà con tolleranza al virus del nanismo giallo dell’orzo, se disponibili e adatte all’areale italiano.
• Coordinare epoca di semina e gestione dei residui con le indicazioni regionali e con il rischio locale di migrazione degli afidi.
• Non eliminare indiscriminatamente Prunus padus o la vegetazione marginale: la conservazione degli habitat deve essere bilanciata con il monitoraggio del rischio e con gli obiettivi di biodiversità.

• Il nome scientifico richiama il ciclo associato a Prunus padus, ma in molte aree agricole la specie può mantenersi soprattutto sulle graminacee.
• Il danno più importante non è sempre la sottrazione di linfa: la trasmissione del virus del nanismo giallo dell’orzo può determinare perdite anche quando le colonie visibili sono scarse.
• Le colonie possono essere ridotte da coccinellidi, larve di sirfidi e crisopidi, ragni, entomopatogeni e imenotteri parassitoidi.
• Le popolazioni di afidi dei cereali comprendono più specie; un conteggio complessivo senza identificazione può sovrastimare o sottostimare il rischio attribuibile a R. padi.